图1.As₂O₃靶标蛋白筛选

为了深入了解As₂O₃结合蛋白的功能作用，研究人员使用DAVID数据库对这360个结合蛋白进行GO分析和KEGGpathway分析，结果都显示糖酵解相关蛋白的显著富集（图2A-B）。并构建了As₂O₃结合蛋白的相互作用网络，其中最紧密连接的簇（Cluster 1）由参与糖酵解途径或与糖酵解途径高度相关的许多酶组成（图2C）。为了评估在新鉴定的As₂O₃结合蛋白中是否存在共有序列，研究人员基于一级氨基酸序列进行了MEME基序检索， 确定了许多蛋白包含半胱氨酸（图2D）。该结果也与已知的As₂O₃对半胱氨酸的高亲和力一致，特别是对于许多相邻的半胱氨酸。

图2.As₂O₃靶向糖酵解通路

鉴于As₂O₃结合蛋白的多数被鉴定为糖酵解酶，研究人员对As₂O₃结合及其对糖酵解的关键酶的功能性结果进行了更详细的体外表征。其中糖酵解酶HK1是As₂O₃的结合蛋白，因此研究人员也对HK2进行研究。尽管HK2不在人类蛋白质组芯片上，但已知该蛋白在快速生长的肿瘤中维持高葡萄糖分解代谢率方面起关键作用，并且与HK1高度同源。因此，研究人员推断As₂O₃也可能与HK2结合。WB实验表明，As₂O₃能与HK2及其他糖酵解酶结合，并且加入As₂O₃解毒剂BAL后，结合作用显著降低（图3A）。研究人员利用生物膜层干涉技术（BLI）测定PML和HK2对As₂O₃的结合亲和力，发现它们与As₂O₃的相互作用相当强（Kd分别为860 nM和12.3 nM）（图3B）。

进一步，研究人员使用链霉亲和素琼脂糖亲和力测定法研究了As₂O₃是否直接结合细胞内的HK2。首先将HEK293T细胞与As₂O₃-Biotin一起孵育，将细胞裂解物与链霉亲和素-琼脂糖一起孵育以分离As₂O₃结合蛋白，然后通过变性将其与琼脂糖解离并用抗HK2检测。如图所示，As₂O₃-Biotin确实与细胞内的HK2结合，并且这种结合可以通过预先加入As₂O₃而减弱（图3C）。

接着，研究人员测定了As₂O₃结合HK2后对HK2活性的影响，发现2μM As₂O₃在体外急剧抑制HK2的活性，显著降低葡萄糖-6-磷酸（G6P）反应产物（图3D）。

图3.As₂O₃与HK2结合并抑制其体外活性

已有研究表明，As₂O₃处理癌细胞时会导致显著的生长抑制和凋亡。因此，研究人员猜测As₂O₃对癌细胞的这些有害作用的可能机制之一是通过As₂O₃对HK2的抑制性结合来介导的。为了验证这一假设，研究人员在胃癌细胞系SGC7901细胞中过表达HK2（图4A-B），用As₂O₃处理这些细胞，并通过流式细胞术监测细胞凋亡。结果显示，用As₂O₃处理细胞12小时后，在对照细胞中显著诱导细胞凋亡（18.1％），但在HK2过表达的细胞中凋亡率降至1.32％（图4C-D）。

图4.HK2过表达逆转As₂O₃诱导的细胞凋亡

因为As₂O₃与直接参与糖酵解通路的大部分酶结合并抑制HK2的活性，研究人员假设As₂O₃处理的癌细胞中该通路的许多代谢物将发生显著变化。为了测试这种可能性，在胃癌细胞系SGC7901中进行了这些代谢物变化的系统分析。糖酵解的第一步和限速步骤由己糖激酶（癌细胞中的HK2）催化（图5A）。代谢组学分析显示，用As₂O₃处理12h的细胞中己糖激酶的直接产物G6P浓度低于对照细胞，甚至在24h更低（图5B）。此外，用As₂O₃处理24h的细胞中乳酸的浓度（糖酵解程度的指数）也低于对照细胞（图5C）。为了排除As₂O₃处理后改变了细胞中葡萄糖的浓度，而导致较低浓度的G6P和乳酸的可能性，对SGC7901细胞中葡萄糖的浓度进行研究，发现在所有时间点，As₂O₃处理细胞中葡萄糖的浓度与对照细胞没有显著差异（图4D）。这些结果表明As₂O₃显著抑制糖酵解，并表明抑制己糖激酶活性是细胞内这种作用的主要因素。

图5.HK2是体内As₂O₃的靶标

在本研究中，利用人类蛋白组芯片技术找到As₂O₃的直接结合蛋白对于揭开As₂O₃抗癌机制的大幕十分关键。在近30年的研究中，研究人员采用传统方法找到的As₂O₃直接作用靶点不超过20个，大部分研究都是从转录组和蛋白表达调控水平去间接解释As₂O₃的作用机理。陶生策教授的研究成果不仅让学界对于As₂O₃的作用机理有了更新的认识。同时，该研究的技术路线为小分子药物靶点的筛选和机制研究提供了新的技术示范。即通过蛋白质组芯片技术快速寻找经典小分子药物的直接作用蛋白，阐明药物调控机理。

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